使用方法：

1、常规固定，常采用 10%的福尔马林，常规脱水包埋。

2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。

3、再用蒸馏水洗 2 次。

4、用试剂（A）氧化剂室温（25-30℃）处理10～20min。

5、自来水冲洗 1 次，再用蒸馏水浸洗 2 次。

6、样本放入试剂（B）Schiff试剂中，置于室温（25-30℃）染色 10～20min。

7、自来水冲洗 10min（染色较深的切片可缩短时间）。

8、样本置于Mayer’s苏木素染色液中，染细胞核 1～2min。

9、酸性分化液分化 2～5s（选做）

10、自来水冲洗 10～15min使细胞核返蓝。

11、梯度乙醇脱水,二甲苯透明，中性树胶封

染色结果：  

PAS反应阳性物质(糖原或多糖)均呈红色或紫红色；细胞核呈蓝色。

注意事项：

1、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

2、氧化剂氧化时间不宜过久，氧化时的温度以 18～22℃最佳。

3、氧化剂和Schiff试剂应置于 4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气。使用前，最好提前 30min 取出恢复到室温后再使用，避光暗处使用。

4、酸性分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5、在氧化剂和Schiff试剂中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。

6、冷冻切片染色时间可能要缩短。

7、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

更多信息：糖原pas染色试剂盒

http://www.bi-gene.com/ParentList-2250386.html
https://www.chem17.com/st431186/product_36090960.html